質粒抽提的基本原理及操作流程

⒈質粒抽提基本原理

在其中采用幾種水溶液及其硅酸化學纖維膜（超濾膜柱）。 水溶液Ⅰ：50 mM果糖 / 25 mMTris-HCl/ 10 mMEDTA，pH 8.0；水溶液Ⅱ：0.2 N NaOH / 1%SDS； 水溶液Ⅲ：3 M 醋酸鉀/ 2 M 醋酸/75%乙醇。

水溶液Ⅰ

果糖是使飄浮后的大腸埃希菌不容易迅速堆積到水管的底端；EDTA是Ca2+和Mg2+等二價金屬材料正離子的螯合劑，其關鍵目地是以便鰲合二價金屬材料正離子進而達到抑制DNase的特異性；可加上RNase A消化吸收RNA。

水溶液Ⅱ

此步為堿解決。在其中NaOH關鍵是以便融解體細胞，釋放出來DNA，由于在強偏堿的狀況下，細胞質產生了從兩層膜結構工程向微囊構造的轉變。SDS與NaOH聯用，其目地是以便提高NaOH的強偏堿，一起SDS做為陽離子表活劑毀壞脂兩層膜。那步要記牢二點：shou位，時間不可以太長，由于在那樣的偏堿標準下基因組DNA-p段也會漸漸地破裂；其次，務必溫柔混和，要不然基因組DNA會破裂。

水溶液Ⅲ

水溶液III的功效是沉定蛋白質和中和反應。在其中醋酸鉀是以便使鉀離子換置SDS中的鉀離子而產生了PDS，由于十二烷基硫酸鈉（sodium dodecylsulfate）碰到鉀離子后變為了十二烷基硫酸鉀 （potassium dodecylsulfate, PDS），而PDS不是溶水的，一起1個SDS分子結構均值融合2個碳水化合物，鉀鈉正離子換置所造成的很多沉定大自然就將絕大多數蛋白沉定了。2 M的醋酸是以便中合NaOH。基因組DNA如果產生破裂，要是是50－100 kb尺寸的片段，就沒有方法再被 PDS共沉淀了，因此堿解決的時間要短，并且不可猛烈震蕩，要不然蕞終獲得的質粒上都會有很多的基因組DNA滲入，瓊脂糖電泳能夠 觀查到這條濃濃總DNA條帶。75%乙醇關鍵是以便清理鹽分和抑止Dnase；一起水溶液III的強酸堿性都是以便使DNA盡快融合在硅酸化學纖維膜上

⒉質粒抽提流程

⑴應用質粒提取試劑盒獲取質粒時請參照實際試劑盒的操作指南。如Omega企業的E.Z.N.A.? Plasmid Mini Kit I, Q(capless) Spin （質粒提取盒）。

⑵堿裂解手提式法：此方式適用少量質粒DNA的獲取，獲取的質粒DNA可立即用以酶切、PCR測序、銀染編碼序列分析。方式給出：

①接1%含質粒的大腸埃希菌體細胞于2mlLB培養液。

②37℃震蕩塑造留宿。

③取1.5ml菌體于Ep管(離心管)，以4000rpm抽濾3min，棄上清液。

④加0.lml水溶液I（1%果糖，50mM/LEDTApH8.0，25mM/LTris-HClpH8.0）充足混和。

⑤添加0.2ml水溶液II（0.2mM/LNaOH，1%SDS），輕輕地旋轉攪拌，放置冰浴5min.

⑥添加0.15m1預冷水溶液III（5mol/LKAc，pH4.8），輕輕地旋轉攪拌，放置冰浴5min.

⑦以10，000rpm抽濾20min，取上清液于另翻新Ep管。

⑧添加等容積的異戊醇，攪拌后靜放10min.

⑨以10，000rpm抽濾20min，棄上清。

⑩用70%酒精0.5ml清洗一回，吸干全部液體。

待沉定干躁后，溶解50ulTE緩沖液中（或60℃溫育雙蒸水）。